Uma célula T é um tipo de linfócito que se desenvolve na glândula timo (daí o nome) e desempenha um papel central na resposta imunológica. As células T podem ser distinguidas de outros linfócitos pela presença de um receptor de células T na superfície da célula. Essas células imunes se originam como células precursoras, derivadas da medula óssea, e se desenvolvem em vários tipos distintos de células T, uma vez que migraram para o timo. A diferenciação das células T continua mesmo depois que elas saem do timo.
Grupos de células T específicas e diferenciadas têm um papel importante no controle e na formação da resposta imune, fornecendo uma variedade de funções relacionadas ao sistema imunológico. Uma dessas funções é a morte celular imunomediada, e é realizada por células T de várias maneiras: as células T CD8 +, também conhecidas como “células assassinas”, são citotóxicas – isso significa que são capazes de matar diretamente as células infectadas por vírus células, bem como células cancerosas. As células T CD8 + também são capazes de utilizar pequenas proteínas de sinalização, conhecidas como citocinas, para recrutar outras células ao montar uma resposta imune. Uma população diferente de células T, as células T CD4 +, funcionam como “células auxiliares”. Ao contrário das células T killer CD8 +, essas células T auxiliares CD4 + funcionam matando indiretamente as células identificadas como estranhas: elas determinam se e como outras partes do sistema imunológico respondem a uma ameaça específica percebida. As células T auxiliares também usam a sinalização de citocinas para influenciar as células B regulatórias diretamente e outras populações de células indiretamente. As células T reguladoras são outra população distinta dessas células que fornecem o mecanismo crítico de tolerância, pelo qual as células imunes são capazes de distinguir células invasoras de “próprias” – evitando, assim, que as células imunes montem inadequadamente uma resposta contra si mesmas (o que seria, por definição, uma resposta “auto-imune”). Por esta razão, essas células T reguladoras também foram chamadas de células T “supressoras”. Essas mesmas células autotolerantes são cooptadas por células cancerosas para evitar o reconhecimento de células tumorais e uma resposta imunológica contra elas.
Desenvolvimento
Origem, desenvolvimento inicial e migração para o timo
Todas as células T tem origem de células-tronco hematopoiéticas (HSC) c-kit + Sca1 + que residem na medula óssea. Em alguns casos, a origem pode ser o fígado fetal durante o desenvolvimento embrionário. O HSC então se diferencia em progenitores multipotentes (MPP) que retêm o potencial de se tornarem células mielóides e linfóides. O processo de diferenciação então prossegue para um progenitor linfoide comum (CLP), que só pode se diferenciar em células T, B ou NK. Essas células CLP então migram via sangue para o timo, onde se enxertam. As primeiras células que chegaram ao timo são denominadas duplo-negativas, pois não expressam nem o co-receptor CD4 nem CD8. As células CLP recém-chegadas são células CD4 − CD8 − CD44 + CD25 − ckit + e são denominadas células progenitoras tímicas iniciais (ETP). Essas células então passarão por uma rodada de divisão e diminuirão a regulação do c-kit e serão denominadas células DN1.
Selecção TCR-Beta
No estágio DN2 (CD44 + CD25 +), as células regulam positivamente os genes de recombinação RAG1 e RAG2 e reorganizam o locus TCRβ, combinando V-D-J e genes da região constante numa tentativa de criar uma cadeia TCRβ funcional. À medida que o timócito em desenvolvimento progride para o estágio DN3 (CD44-CD25 +), a célula T expressa uma cadeia α invariante chamada pré-Tα ao lado do gene TCRβ. Se a cadeia β rearranjada emparelha com sucesso com a cadeia α invariante, são produzidos sinais que cessam o rearranjo da cadeia β (e silencia o alelo alternativo). Embora esses sinais exijam esse pré-TCR na superfície celular, eles são independentes da ligação do ligante ao pré-TCR. Se o pré-TCR se formar, então a célula regula negativamente CD25 e é denominada célula DN4 (CD25-CD44-). Essas células então passam por um ciclo de proliferação e começam a reorganizar o locus TCRα.
Selecção Positiva
Timócitos duplo-positivos (CD4 + / CD8 +) migram profundamente para o córtex tímico, onde se apresentam com autoantígenos. Esses autoantígenos são expressos por células epiteliais corticais tímicas em moléculas de MHC na superfície das células epiteliais corticais. Apenas aqueles timócitos que interagem com MHC-I ou MHC-II receberão um “sinal de sobrevivência” vital. Todos os que não podem (se não interagirem com força suficiente) morrerão por “morte por negligência” (sem sinal de sobrevivência). Este processo garante que as células T selecionadas terão uma afinidade MHC que pode servir a funções úteis no corpo (isto é, as células devem ser capazes de interagir com MHC e complexos de peptídeo para efetuar as respostas imunes). A grande maioria dos timócitos em desenvolvimento morrerá durante esse processo. O processo de seleção positiva leva vários dias.
O destino de um timócito é determinado durante a seleção positiva. Células duplamente positivas (CD4 + / CD8 +) que interagem bem com moléculas de MHC de classe II eventualmente se tornarão células CD4 +, enquanto os timócitos que interagem bem com moléculas de MHC de classe I amadurecem em células CD8 +. Uma célula T torna-se uma célula CD4 + regulando negativamente a expressão de seus receptores de superfície celular CD8. Se a célula não perder seu sinal, ela continuará a diminuir a regulação de CD8 e se tornará uma célula CD4 +, única célula positiva.
Este processo não remove os timócitos que podem causar autoimunidade. As células potencialmente autoimunes são removidas pelo processo de seleção negativa, que ocorre na medula tímica (discutido abaixo).
Selecção Negativa
A seleção negativa remove os timócitos que são capazes de se ligarem fortemente a peptídeos de MHC “próprios”. Os timócitos que sobrevivem à seleção positiva migram em direção ao limite do córtex e da medula no timo. Enquanto na medula, eles são novamente apresentados a um autoantígeno apresentado no complexo MHC de células epiteliais tímicas medulares (mTECs). Os mTECs devem ser AIRE + para expressar adequadamente os autoantígenos de todos os tecidos do corpo em seus peptídeos MHC de classe I. Alguns mTECs são fagocitados por células dendríticas tímicas; isso permite a apresentação de autoantígenos em moléculas de MHC de classe II (células CD4 + selecionadas positivamente devem interagir com moléculas de MHC de classe II, portanto, APCs, que possuem MHC de classe II, devem estar presentes para a seleção negativa de células T CD4 +). Os timócitos que interagem muito fortemente com o autoantígeno recebem um sinal apoptótico que leva à morte celular. No entanto, algumas dessas células são selecionadas para se tornarem células Treg. As células restantes saem do timo como células T virgens maduras (também conhecidas como emigrantes tímicos recentes [8]). Este processo é um importante componente da tolerância central e serve para prevenir a formação de células T autorreativas, capazes de induzir doenças autoimunes no hospedeiro.
A seleção β é o primeiro ponto de verificação, onde as células T que são capazes de formar um pré-TCR funcional com uma cadeia alfa invariante e uma cadeia beta funcional podem continuar o desenvolvimento no timo. Em seguida, a seleção positiva verifica se as células T reorganizaram com sucesso seu locus TCRα e são capazes de reconhecer complexos de peptídeo-MHC com afinidade apropriada. A seleção negativa na medula oblitera as células T que se ligam fortemente aos autoantígenos expressos nas moléculas de MHC. Esses processos de seleção permitem a tolerância do próprio sistema imunológico. As células T típicas que deixam o timo (via junção corticomedular) são autorrestritas, autotolerantes e positivas.
Saída tímica
Cerca de 98% dos timócitos morrem durante os processos de desenvolvimento no timo, falhando na seleção positiva ou na selecção negativa, enquanto os outros 2% sobrevivem e deixam o timo para se tornarem células T imunocompetentes maduras. O timo contribui com menos células à medida que a pessoa envelhece. Como o timo encolhe cerca de 3% ao ano durante a meia-idade, ocorre uma queda correspondente na produção tímica de células T virgens, deixando a expansão e regeneração das células T periféricas para desempenhar um papel maior na proteção dos idosos.
Tipos de células T
As células T são agrupadas em uma série de subconjuntos com base em sua função. As células T CD4 e CD8 são selecionadas no timo, mas sofrem diferenciação adicional na periferia em células especializadas que têm funções diferentes. Os subconjuntos de células T foram inicialmente definidos pela função, mas também têm padrões de expressão de genes ou proteínas associados.
Células T adaptativas convencionais
Helper CD4+ T cells
As células T auxiliares (células TH) auxiliam outros linfócitos, incluindo a maturação de células B em células plasmáticas e células B de memória e ativação de células T citotóxicas e macrófagos. Essas células também são conhecidas como células T CD4 +, pois expressam o CD4 em suas superfícies. As células T auxiliares tornam-se ativadas quando são apresentadas a antígenos peptídicos por moléculas do MHC de classe II, que são expressas na superfície das células apresentadoras de antígenos (APCs). Uma vez ativados, eles se dividem rapidamente e secretam citocinas que regulam ou auxiliam a resposta imune. Essas células podem se diferenciar em um de vários subtipos, que têm funções diferentes. As citocinas direcionam as células T para subtipos específicos.
Tipo de célula | Citocinas produzidas | Factor chave de transcrição | Papel na defesa imunológica | Papel na autoimunidade |
---|---|---|---|---|
Th1 | IFNγ | Tbet | Produz uma resposta inflamatória, chave para defesa contra bactérias intracelulares, vírus e cancro. | MS, Type 1 diabetes |
Th2 | IL-4 | GATA-3 | Auxiliar na diferenciação e produção de anti-corpos pelas células B | Asma e outras doenças alérgicas |
Th17 | IL-17 | RORγt | Defesa contra patógenos intestinais e nas barreiras da mucosa | MS, artrite reumatóide, psoríase |
Th9 | IL-9 | IRF4, PU.1 | Defesa contra helmintos (vermes parasitas) | Esclerose múltipla |
Tfh | IL-21, IL-4 | Bcl-6 | Ajudam as células B a produzir anti-corpos | Asma e outras doenças alérgicas |
Células T CD8 + citotóxicas
Memory T cells
As células T virgens de antígeno se expandem e se diferenciam em células T efetoras e de memória após encontrarem seu antígeno cognato no contexto de uma molécula de MHC na superfície de uma célula apresentadora de antígeno profissional (por exemplo, uma célula dendrítica). A coestimulação apropriada deve estar presente no momento do encontro com o antígeno para que esse processo ocorra. Historicamente, pensava-se que as células T de memória pertencessem aos subtipos efetoras ou de memória central, cada uma com seu próprio conjunto distinto de marcadores de superfície celular (ver abaixo). Posteriormente, várias novas populações de células T de memória foram descobertas, incluindo células T de memória residentes em tecido (Trm), células TSCM de memória-tronco e células T de memória virtual. O único tema unificador para todos os subtipos de células T de memória é que eles têm vida longa e podem se expandir rapidamente para um grande número de células T efetoras após a reexposição ao seu antígeno cognato. Por esse mecanismo, eles fornecem ao sistema imunológico “memória” contra patógenos previamente encontrados. As células T de memória podem ser CD4 + ou CD8 + e geralmente expressam CD45RO.
Subtipos de células T de memória:
- As células T de memória central (células TCM) expressam CD45RO, receptor de quimiocina C-C tipo 7 (CCR7) e L-selectina (CD62L). As células T de memória central também têm expressão intermediária a alta de CD44. Essa subpopulação de memória é comumente encontrada nos linfonodos e na circulação periférica. (Nota – a expressão de CD44 é geralmente usada para distinguir células T de memória ingênuas de murino).
- As células T efetoras de memória (células TEM e células TEMRA) expressam CD45RO, mas não têm expressão de CCR7 e L-selectina. Eles também têm expressão intermediária a alta de CD44. Essas células T de memória não têm receptores de linfonodos e, portanto, são encontradas na circulação periférica e nos tecidos. TEMRA significa células de memória efetoras terminalmente diferenciadas que re-expressam CD45RA, que é um marcador geralmente encontrado em células T naive.
- As células T de memória residentes nos tecidos (TRM) ocupam os tecidos (pele, pulmão, etc.) sem recircular. Um marcador de superfície celular que tem sido associado ao TRM é o interno αeβ7, também conhecido como CD103.
- As células T de memória virtual diferem dos outros subconjuntos de memória porque não se originam após um evento de expansão clonal forte. Assim, embora essa população como um todo seja abundante na circulação periférica, os clones de células T de memória virtual individuais residem em frequências relativamente baixas. Uma teoria é que a proliferação homeostática dá origem a essa população de células T. Embora as células T de memória virtual CD8 tenham sido as primeiras a serem descritas, agora é conhecido que células de memória virtual CD4 também existem.
Células T CD4 + regulatórias
As células T regulatórias são cruciais para a manutenção da tolerância imunológica. Seu papel principal é desligar a imunidade mediada por células T no final de uma reação imune e suprimir as células T autorreativas que escaparam do processo de seleção negativa no timo.
Duas classes principais de células Treg CD4 + foram descritas – células Treg FOXP3 + e células Treg FOXP3−.
As células T reguladoras podem se desenvolver durante o desenvolvimento normal no timo e são então conhecidas como células Treg do timo, ou podem ser induzidas perifericamente e são chamadas de células Treg derivadas da periferia. Esses dois subconjuntos eram anteriormente chamados de “ocorrência natural” e “adaptativo” ou “induzido”, respectivamente. Ambos os subconjuntos requerem a expressão do fator de transcrição FOXP3, que pode ser usado para identificar as células. Mutações no gene FOXP3 podem prevenir o desenvolvimento de células T regulatórias, causando a doença autoimune fatal IPEX.
Vários outros tipos de células T têm atividade supressora, mas não expressam FOXP3. Isso inclui células Tr1 e células Th3, que se acredita que se originam durante uma resposta imune e agem produzindo moléculas supressoras. As células Tr1 estão associadas a IL-10 e as células Th3 estão associadas a TGF-beta. Recentemente, células Treg17 foram adicionadas a essa lista.
Células T inatas
Célula T natural killer
As células T natural killer (células NKT – não confundir com as células natural killer do sistema imunológico inato) unem o sistema imunológico adaptativo ao sistema imunológico inato. Ao contrário das células T convencionais que reconhecem antígenos peptídicos apresentados pelas moléculas do complexo principal de histocompatibilidade (MHC), as células NKT reconhecem o antígeno glicolipídeo apresentado pelo CD1d. Uma vez ativadas, essas células podem desempenhar funções atribuídas às células Th e Tc (ou seja, produção de citocinas e liberação de moléculas citolíticas / que matam células). Eles também são capazes de reconhecer e eliminar algumas células tumorais e células infectadas com vírus do herpes.
Invariante associado à mucosa
Células de células T invariantes associadas à mucosa (MAIT) exibem qualidades inatas semelhantes a efetoras. Em humanos, as células MAIT são encontradas no sangue, fígado, pulmões e mucosa, defendendo contra a atividade microbiana e infecções. A proteína similar ao MHC classe I, MR1, é responsável por apresentar metabólitos da vitamina B produzidos por bactérias às células MAIT. Após a apresentação do antígeno estranho pelo MR1, as células MAIT secretam citocinas pró-inflamatórias e são capazes de lisar células infectadas por bactérias. As células MAIT também podem ser ativadas por meio de sinalização independente de MR1. Além de possuir funções semelhantes às inatas, este subconjunto de células T suporta a resposta imune adaptativa e tem um fenótipo semelhante à memória. Além disso, acredita-se que as células MAIT desempenhem um papel em doenças autoimunes, como esclerose múltipla, artrite e doença inflamatória intestinal, embora evidências definitivas ainda não tenham sido publicadas.
Células T gama delta
As células T gama delta (células T γδ) representam um pequeno subconjunto de células T que possuem um TCR γδ em vez do TCR αβ na superfície celular. A maioria das células T expressa cadeias αβ TCR. Este grupo de células T é muito menos comum em humanos e ratos (cerca de 2% do total de células T) e são encontrados principalmente na mucosa intestinal, numa população de linfócitos intraepiteliais. Em coelhos, ovelhas e galinhas, o número de células T γδ pode chegar a 60% do total de células T. As moléculas antigênicas que ativam as células T γδ ainda são em sua maioria desconhecidas. No entanto, as células T γδ não são restritas ao MHC e parecem ser capazes de reconhecer proteínas inteiras em vez de exigir que os peptídeos sejam apresentados por moléculas de MHC em APCs. Algumas células T γδ murinas reconhecem moléculas MHC de classe IB. As células T γδ humanas que usam os fragmentos do gene Vγ9 e Vδ2 constituem a principal população de células T γδ no sangue periférico, e são únicas por responderem especificamente e rapidamente a um conjunto de precursores isoprenóides fosforilados não peptídicos, coletivamente denominados fosfoantígenos, que são produzidos por praticamente todas as células vivas. Os fosfoantígenos mais comuns de células animais e humanas (incluindo células cancerosas) são isopentenil pirofosfato (IPP) e seu isômero dimetilalil pirofosfato (DMPP). Muitos micróbios produzem o composto altamente ativo hidroxi-DMAPP (HMB-PP) e correspondentes conjugados de mononucleotídeos, além de IPP e DMAPP. As células vegetais produzem os dois tipos de fosfoantígenos. As drogas que ativam células T Vγ9 / Vδ2 humanas compreendem fosfoantígenos e aminobifosfonatos sintéticos, que regulam positivamente IPP / DMAPP endógeno.
Activação
O receptor de células T existe como um complexo de várias proteínas. O receptor de células T real é composto por duas cadeias de peptídeos separadas, que são produzidas a partir dos genes alfa e beta do receptor de células T independentes (TCRα e TCRβ). As outras proteínas do complexo são as proteínas CD3: heterodímeros CD3εγ e CD3εδ e, mais importante, um homodímero CD3ζ, que tem um total de seis motivos ITAM. Os motivos ITAM no CD3ζ podem ser fosforilados por Lck e, por sua vez, recrutar ZAP-70. Lck e / ou ZAP-70 também podem fosforilar as tirosinas em muitas outras moléculas, incluindo CD28, LAT e SLP-76, o que permite a agregação de complexos de sinalização em torno dessas proteínas.
LAT fosforilado recruta SLP-76 para a membrana, onde pode então trazer PLC-γ, VAV1, Itk e potencialmente PI3K. O PLC-γ cliva PI (4,5) P2 no folheto interno da membrana para criar os intermediários ativos diacilglicerol (DAG), inositol-1,4,5-trifosfato (IP3); PI3K também atua no PIP2, fosforilando-o para produzir fosfatidilinositol-3,4,5-trisfosfato (PIP3). O DAG liga e ativa alguns PKCs. O mais importante nas células T é PKC-θ, crítico para ativar os fatores de transcrição NF-κB e AP-1. O IP3 é liberado da membrana pelo PLC-γ e se difunde rapidamente para ativar os receptores dos canais de cálcio no RE, o que induz a liberação de cálcio no citosol. Cálcio baixo no retículo endoplasmático causa agrupamento STIM1 na membrana ER e leva à ativação dos canais CRAC da membrana celular que permite que o cálcio adicional flua para o citosol a partir do espaço extracelular. Este cálcio citosólico agregado liga a calmodulina, que pode então ativar a calcineurina. A calcineurina, por sua vez, ativa o NFAT, que então se transloca para o núcleo. O NFAT é um fator de transcrição que ativa a transcrição de um conjunto pleiotrópico de genes, mais notáveis, IL-2, uma citocina que promove a proliferação de células T ativadas em longo prazo.
PLC-γ também pode iniciar a via NF-κB. O DAG ativa PKC-θ, que então fosforila CARMA1, fazendo com que ele se desdobre e funcione como um andaime. Os domínios citosólicos ligam um adaptador BCL10 via domínios CARD (domínios de ativação e recrutamento de caspase); que então se liga ao TRAF6, que é ubiquitinado em K63.:513–523 Esta forma de ubiquitinação não leva à degradação das proteínas alvo. Em vez disso, serve para recrutar NEMO, IKKα e -β, e TAB1-2 / TAK1. A TAK 1 fosforila IKK-β, que então fosforila IκB permitindo a ubiquitinação de K48: leva à degradação do proteassoma. Rel A e p50 podem então entrar no núcleo e ligar o elemento de resposta NF-κB. Isso, juntamente com a sinalização NFAT, permite a ativação completa do gene IL-2.
Embora na maioria dos casos a ativação seja dependente do reconhecimento do antígeno pelo TCR, foram descritas vias alternativas para ativação. Por exemplo, foi demonstrado que células T citotóxicas tornam-se ativadas quando direcionadas por outras células T CD8, levando à tolerização destas.
Na primavera de 2014, o experimento de Ativação de Células T no Espaço (TCAS) foi lançado na Estação Espacial Internacional na missão SpaceX CRS-3 para estudar como “deficiências no sistema imunológico humano são afetadas por um ambiente de microgravidade”.
A ativação das células T é modulada por espécies reativas de oxigênio.
Discriminação de antígeno
Uma característica única das células T é sua capacidade de discriminar entre células saudáveis e anormais (por exemplo, infectadas ou cancerosas) no corpo. As células saudáveis tipicamente expressam um grande número de pMHC auto-derivados em sua superfície celular e, embora o receptor de antígeno da célula T possa interagir com pelo menos um subconjunto desses pMHC próprios, a célula T geralmente ignora essas células saudáveis. No entanto, quando essas mesmas células contêm quantidades mínimas de pMHC derivado do patógeno, as células T são capazes de se tornar ativadas e iniciar respostas imunológicas. A capacidade das células T de ignorar as células saudáveis, mas responder quando essas mesmas células contêm pMHC derivado de patógeno (ou câncer) é conhecida como discriminação de antígeno. Os mecanismos moleculares que fundamentam esse processo são controversos.
Significado clínico
Deficiência
As causas da deficiência de células T incluem linfocitopenia de células T e / ou defeitos na função de células T individuais. A insuficiência completa da função das células T pode resultar de condições hereditárias, como imunodeficiência combinada grave (SCID), síndrome de Omenn e hipoplasia da cartilagem-cabelo. [46] As causas de insuficiências parciais da função das células T incluem a síndrome da imunodeficiência adquirida (AIDS) e condições hereditárias, como a síndrome de DiGeorge (DGS), síndromes de quebra cromossômica (CBSs) e distúrbios combinados de células B e T, como ataxia-telangiectasia (AT ) e síndrome de Wiskott-Aldrich (WAS).
Os principais patógenos preocupantes nas deficiências de células T são patógenos intracelulares, incluindo o vírus Herpes simplex, Mycobacterium e Listeria. Além disso, as infecções fúngicas também são mais comuns e graves nas deficiências de células T.
Cancro
O cancro de células T é denominado linfoma de células T e é responsável por talvez um em cada dez casos de linfoma não-Hodgkin. As principais formas de linfoma de células T são:
- Linfoma extranodal de células T
- Linfomas cutâneos de células T: síndrome de Sézary e micose fungóide
- Linfoma anaplásico de células grandes
- Linfoma angioimunoblástico de células TAngioimmunoblastic T cell lymphoma
Exaustão
A exaustão de células T é um estado de células T disfuncionais. É caracterizada por perda progressiva de função, mudanças nos perfis de transcrição e expressão sustentada de receptores inibitórios. No início, as células perdem a capacidade de produzir IL-2 e TNFα, seguido pela perda de alta capacidade proliferativa e potencial citotóxico, eventualmente levando à sua deleção. As células T esgotadas normalmente indicam níveis mais elevados de CD43, CD69 e receptores inibitórios combinados com expressão mais baixa de CD62L e CD127. A exaustão pode se desenvolver durante infecções crônicas, sepse e cancro. As células T exauridas preservam sua exaustão funcional mesmo após a exposição repetida ao antígeno.
Durante a infecção crónica e septicemia
A exaustão das células T pode ser desencadeada por vários factores, como exposição persistente ao antígeno e falta de ajuda das células T CD4. A exposição ao antígeno também tem efeito no curso da exaustão porque o tempo de exposição mais longo e a carga viral mais alta aumentam a gravidade da exaustão das células T. É necessária uma exposição de pelo menos 2–4 semanas para estabelecer a exaustão. Outro factor capaz de induzir a exaustão são os receptores inibitórios, incluindo a proteína 1 de morte celular programada (PD1), CTLA-4, proteína 3 da membrana da célula T (TIM3) e proteína do gene 3 de ativação de linfócitos (LAG3). Moléculas solúveis, como as citocinas IL-10 ou TGF-β, também são capazes de desencadear a exaustão. Os últimos fatores conhecidos que podem desempenhar um papel na exaustão das células T são as células regulatórias. As células Tregs podem ser uma fonte de IL-10 e TGF-β e, portanto, podem desempenhar um papel na exaustão de células T. Além disso, a exaustão de células T é revertida após a depleção de células Treg e bloqueio de PD1. A exaustão de células T também pode ocorrer durante a sepse como resultado de uma tempestade de citocinas. Mais tarde, após o encontro séptico inicial, citocinas antiinflamatórias e proteínas pró-apoptóticas assumem o controle para proteger o corpo de danos. A sepse também carrega uma alta carga de antígenos e inflamação. Nesse estágio de sepse, a exaustão das células T aumenta. Atualmente, existem estudos com o objetivo de utilizar bloqueios de receptores inibitórios no tratamento da sepse.
Durante o transplante
Durante a infecção, pode ocorrer exaustão de células T após exposição persistente ao antígeno após transplante de enxerto, situação semelhante ocorre com a presença de aloantígeno. Foi demonstrado que a resposta das células T diminui com o tempo após o transplante renal. Esses dados sugerem que a exaustão de células T desempenha um papel importante na tolerância de um enxerto, principalmente pela depleção de células T CD8 alorreativas. Vários estudos mostraram um efeito positivo da infecção crônica na aceitação do enxerto e sua sobrevivência em longo prazo mediada em parte pela exaustão das células T. Também foi demonstrado que a exaustão das células T do receptor fornece condições suficientes para a transferência de células NK. Embora existam dados mostrando que a indução da exaustão das células T pode ser benéfica para o transplante, ela também traz desvantagens entre as quais podem ser contados o aumento do número de infecções e o risco de desenvolvimento de tumor.
Durante o Cancro
Durante o cancro, a exaustão das células T desempenha um papel na protecção do tumor. De acordo com pesquisas, algumas células associadas ao cancro, bem como as próprias células tumorais, podem induzir activamente a exaustão das células T no local do tumor. A exaustão de células T também pode desempenhar um papel nas recidivas do cancro, conforme mostrado na leucemia. Alguns estudos até sugeriram que é possível prever a recidiva da leucemia com base na expressão dos receptores inibitórios PD-1 e TIM-3 pelas células T. Nos últimos anos, houve muitos experimentos e ensaios clínicos com bloqueadores de pontos de controle imunológicos na terapia do cancro. Alguns deles foram aprovados como terapias válidas e agora são usados em clínicas. Os receptores inibitórios direccionados por esses procedimentos médicos são vitais para a exaustão das células T e bloqueá-los pode reverter essas mudanças.
Referências
- ^ Alberts B, Johnson A, Lewis J, Raff M, Roberts k, Walter P (2002) Molecular Biology of the Cell. Garland Science: New York, NY pg 1367. “T cells and B cells derive their names from the organs in which they develop. T cells develop in the thymus, and B cells, in mammals, develop in the bone marrow in adults or the liver in fetuses.”
- ^ Kondo, Motonari (December 2016). “One Niche to Rule Both Maintenance and Loss of Stemness in HSCs”. Immunity. 45 (6): 1177–1179. doi:10.1016/j.immuni.2016.12.003. PMID 28002722.
- ^ Osborne, Lisa C.; Dhanji, Salim; Snow, Jonathan W.; Priatel, John J.; Ma, Melissa C.; Miners, M. Jill; Teh, Hung-Sia; Goldsmith, Mark A.; Abraham, Ninan (19 March 2007). “Impaired CD8 T cell memory and CD4 T cell primary responses in IL-7Rα mutant mice”. The Journal of Experimental Medicine. 204 (3): 619–631. doi:10.1084/jem.20061871. PMC 2137912. PMID 17325202.
- ^ Janeway, Charles (2012). Immunobiology. Garland Science. pp. 301–305. ISBN 9780815342434.
- ^ Starr TK, Jameson SC, Hogquist KA (2003-01-01). “Positive and negative selection of T cells”. Annual Review of Immunology. 21 (1): 139–176. doi:10.1146/annurev.immunol.21.120601.141107. PMID 12414722.
- ^ Zerrahn J, Held W, Raulet DH (March 1997). “The MHC reactivity of the T cell repertoire prior to positive and negative selection”. Cell. 88 (5): 627–636. doi:10.1016/S0092-8674(00)81905-4. PMID 9054502.
- ^ Hinterberger M, Aichinger M, Prazeres da Costa O, Voehringer D, Hoffmann R, Klein L (June 2010). “Autonomous role of medullary thymic epithelial cells in central CD4(+) T cell tolerance” (PDF). Nature Immunology. 11 (6): 512–519. doi:10.1038/ni.1874. PMID 20431619.
- ^ Pekalski ML, García AR, Ferreira RC, Rainbow DB, Smyth DJ, Mashar M, Brady J, Savinykh N, Dopico XC, Mahmood S, Duley S, Stevens HE, Walker NM, Cutler AJ, Waldron-Lynch F, Dunger DB, Shannon-Lowe C, Coles AJ, Jones JL, Wallace C, Todd JA, Wicker LS (August 2017). “Neonatal and adult recent thymic emigrants produce IL-8 and express complement receptors CR1 and CR2”. JCI Insight. 2 (16). doi:10.1172/jci.insight.93739. PMC 5621870. PMID 28814669.
- ^ Haynes BF, Markert ML, Sempowski GD, Patel DD, Hale LP (2000). “The role of the thymus in immune reconstitution in aging, bone marrow transplantation, and HIV-1 infection”. Annu. Rev. Immunol. 18: 529–560. doi:10.1146/annurev.immunol.18.1.529. PMID 10837068.
- ^ Gutcher I, Becher B (2007). “APC-derived cytokines and T cell polarization in autoimmune inflammation”. J. Clin. Invest. 117 (5): 1119–27. doi:10.1172/JCI31720. PMC 1857272. PMID 17476341.
- ^ Sallusto F, Lenig D, Förster R, Lipp M, Lanzavecchia A (1999). “Two subsets of memory T lymphocytes with distinct homing potentials and effector functions”. Nature. 401 (6754): 708–712. Bibcode:1999Natur.401..708S. doi:10.1038/44385. PMID 10537110.
- ^ Akbar AN, Terry L, Timms A, Beverley PC, Janossy G (April 1988). “Loss of CD45R and gain of UCHL1 reactivity is a feature of primed T cells”. J. Immunol. 140 (7): 2171–8. PMID 2965180.
- ^ Willinger T, Freeman T, Hasegawa H, McMichael AJ, Callan MF (2005). “Molecular signatures distinguish human central memory from effector memory CD8 T cell subsets”(PDF). Journal of Immunology. 175 (9): 5895–903. doi:10.4049/jimmunol.175.9.5895. PMID 16237082.
- ^ Koch S, Larbi A, Derhovanessian E, Özcelik D, Naumova E, Pawelec G (2008). “Multiparameter flow cytometric analysis of CD4 and CD8 T cell subsets in young and old people”. Immunity & Ageing. 5 (6): 6. doi:10.1186/1742-4933-5-6. PMC 2515281. PMID 18657274.
- ^ Shin H, Iwasaki A (September 2013). “Tissue-resident memory T cells”. Immunological Reviews. 255 (1): 165–81. doi:10.1111/imr.12087. PMC 3748618. PMID 23947354.
- ^ Lee YJ, Jameson SC, Hogquist KA (2011). “Alternative memory in the CD8 T cell lineage”. Trends in Immunology. 32 (2): 50–56. doi:10.1016/j.it.2010.12.004. PMC 3039080. PMID 21288770.
- ^ Marusina AI, Ono Y, Merleev AA, Shimoda M, Ogawa H, Wang EA, Kondo K, Olney L, Luxardi G, Miyamura Y, Yilma TD, Villalobos IB, Bergstrom JW, Kronenberg DG, Soulika AM, Adamopoulos IE, Maverakis E (2017). “CD4+ virtual memory: Antigen-inexperienced T cells reside in the naïve, regulatory, and memory T cell compartments at similar frequencies, implications for autoimmunity”. Journal of Autoimmunity. 77: 76–88. doi:10.1016/j.jaut.2016.11.001. PMC 6066671. PMID 27894837.
- ^ Abbas AK, Benoist C, Bluestone JA, Campbell DJ, Ghosh S, Hori S, Jiang S, Kuchroo VK, Mathis D, Roncarolo MG, Rudensky A, Sakaguchi S, Shevach EM, Vignali DA, Ziegler SF (2013). “Regulatory T cells: recommendations to simplify the nomenclature”. Nat. Immunol. 14 (4): 307–8. doi:10.1038/ni.2554. PMID 23507634.
- ^ Singh B, Schwartz JA, Sandrock C, Bellemore SM, Nikoopour E (2013). “Modulation of autoimmune diseases by interleukin (IL)-17 producing regulatory T helper (Th17) cells”. Indian J. Med. Res. 138 (5): 591–4. PMC 3928692. PMID 24434314.
- ^ Mallevaey T, Fontaine J, Breuilh L, Paget C, Castro-Keller A, Vendeville C, Capron M, Leite-de-Moraes M, Trottein F, Faveeuw C (May 2007). “Invariant and noninvariant natural killer T cells exert opposite regulatory functions on the immune response during murine schistosomiasis”. Infection and Immunity. 75 (5): 2171–80. doi:10.1128/IAI.01178-06. PMC 1865739. PMID 17353286.
- ^ Napier RJ, Adams EJ, Gold MC, Lewinsohn DM (2015-07-06). “The Role of Mucosal Associated Invariant T Cells in Antimicrobial Immunity”. Frontiers in Immunology. 6: 344. doi:10.3389/fimmu.2015.00344. PMC 4492155. PMID 26217338.
- ^ Gold MC, Lewinsohn DM (August 2011). “Mucosal associated invariant T cells and the immune response to infection”. Microbes and Infection. 13 (8–9): 742–8. doi:10.1016/j.micinf.2011.03.007. PMC 3130845. PMID 21458588.
- ^ Eckle SB, Corbett AJ, Keller AN, Chen Z, Godfrey DI, Liu L, Mak JY, Fairlie DP, Rossjohn J, McCluskey J (December 2015). “Recognition of Vitamin B Precursors and Byproducts by Mucosal Associated Invariant T Cells”. The Journal of Biological Chemistry. 290 (51): 30204–11. doi:10.1074/jbc.R115.685990. PMC 4683245. PMID 26468291.
- ^ Ussher JE, Klenerman P, Willberg CB (2014-10-08). “Mucosal-associated invariant T-cells: new players in anti-bacterial immunity”. Frontiers in Immunology. 5: 450. doi:10.3389/fimmu.2014.00450. PMC 4189401. PMID 25339949.
- ^ Howson LJ, Salio M, Cerundolo V (2015-06-16). “MR1-Restricted Mucosal-Associated Invariant T Cells and Their Activation during Infectious Diseases”. Frontiers in Immunology. 6: 303. doi:10.3389/fimmu.2015.00303. PMC 4468870. PMID 26136743.
- ^ Hinks TS (May 2016). “Mucosal-associated invariant T cells in autoimmunity, immune-mediated diseases and airways disease”. Immunology. 148 (1): 1–12. doi:10.1111/imm.12582. PMC 4819138. PMID 26778581.
- ^ Bianchini E, De Biasi S, Simone AM, Ferraro D, Sola P, Cossarizza A, Pinti M (March 2017). “Invariant natural killer T cells and mucosal-associated invariant T cells in multiple sclerosis”. Immunology Letters. 183: 1–7. doi:10.1016/j.imlet.2017.01.009. PMID 28119072.
- ^ Serriari NE, Eoche M, Lamotte L, Lion J, Fumery M, Marcelo P, Chatelain D, Barre A, Nguyen-Khac E, Lantz O, Dupas JL, Treiner E (May 2014). “Innate mucosal-associated invariant T (MAIT) cells are activated in inflammatory bowel diseases”. Clinical and Experimental Immunology. 176 (2): 266–74. doi:10.1111/cei.12277. PMC 3992039. PMID 24450998.
- ^ Huang S, Martin E, Kim S, Yu L, Soudais C, Fremont DH, Lantz O, Hansen TH (May 2009). “MR1 antigen presentation to mucosal-associated invariant T cells was highly conserved in evolution”. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106 (20): 8290–5. Bibcode:2009PNAS..106.8290H. doi:10.1073/pnas.0903196106. PMC 2688861. PMID 19416870.
- ^ Chua WJ, Hansen TH (November 2010). “Bacteria, mucosal-associated invariant T cells and MR1”. Immunology and Cell Biology. 88 (8): 767–9. doi:10.1038/icb.2010.104. PMID 20733595.
- ^ Kjer-Nielsen L, Patel O, Corbett AJ, Le Nours J, Meehan B, Liu L, Bhati M, Chen Z, Kostenko L, Reantragoon R, Williamson NA, Purcell AW, Dudek NL, McConville MJ, O’Hair RA, Khairallah GN, Godfrey DI, Fairlie DP, Rossjohn J, McCluskey J (November 2012). “MR1 presents microbial vitamin B metabolites to MAIT cells” (PDF). Nature. 491 (7426): 717–23. Bibcode:2012Natur.491..717K. doi:10.1038/nature11605. PMID 23051753.
- ^ The NIAID resource booklet “Understanding the Immune System (pdf)”.
- ^ Williams MA, Bevan MJ (2007-01-01). “Effector and memory CTL differentiation”. Annual Review of Immunology. 25 (1): 171–92. doi:10.1146/annurev.immunol.25.022106.141548. PMID 17129182.
- ^ Janssen EM, Lemmens EE, Wolfe T, Christen U, von Herrath MG, Schoenberger SP (February 2003). “CD4+ T cells are required for secondary expansion and memory in CD8+ T lymphocytes”. Nature. 421 (6925): 852–6. Bibcode:2003Natur.421..852J. doi:10.1038/nature01441. PMID 12594515.
- ^ Shedlock DJ, Shen H (April 2003). “Requirement for CD4 T cell help in generating functional CD8 T cell memory”. Science. 300 (5617): 337–9. Bibcode:2003Sci…300..337S. doi:10.1126/science.1082305. PMID 12690201.
- ^ Sun JC, Williams MA, Bevan MJ (September 2004). “CD4+ T cells are required for the maintenance, not programming, of memory CD8+ T cells after acute infection”. Nature Immunology. 5 (9): 927–33. doi:10.1038/ni1105. PMC 2776074. PMID 15300249.
- ^ Jennifer Rolland and Robyn O’Hehir, “Turning off the T cells: Peptides for treatment of allergic Diseases,” Today’s life science publishing, 1999, Page 32
- ^ Maverakis E, Kim K, Shimoda M, Gershwin M, Patel F, Wilken R, Raychaudhuri S, Ruhaak LR, Lebrilla CB (2015). “Glycans in the immune system and The Altered Glycan Theory of Autoimmunity”. J Autoimmun. 57 (6): 1–13. doi:10.1016/j.jaut.2014.12.002. PMC 4340844. PMID 25578468.
- ^ Jump up to:a b Tatham P, Gomperts BD, Kramer IM (2003). Signal transduction. Amsterdam: Elsevier Academic Press. ISBN 978-0-12-289632-3.
- ^ Wu H, Arron JR (November 2003). “TRAF6, a molecular bridge spanning adaptive immunity, innate immunity and osteoimmunology”. BioEssays. 25 (11): 1096–105. doi:10.1002/bies.10352. PMID 14579250.
- ^ Milstein O, Hagin D, Lask A, Reich-Zeliger S, Shezen E, Ophir E, Eidelstein Y, Afik R, Antebi YE, Dustin ML, Reisner Y (January 2011). “CTLs respond with activation and granule secretion when serving as targets for T cell recognition”. Blood. 117 (3): 1042–52. doi:10.1182/blood-2010-05-283770. PMC 3035066. PMID 21045195.
- ^ Graham, William (2014-04-14). “SpaceX ready for CRS-3 Dragon launch and new milestones”. NASAspaceflight.com. Retrieved 2014-04-14.
- ^ Belikov AV, Schraven B, Simeoni L (October 2015). “T cells and reactive oxygen species”. Journal of Biomedical Science. 22: 85. doi:10.1186/s12929-015-0194-3. PMC 4608155. PMID 26471060.
- ^ Jump up to:a b Feinerman O, Germain RN, Altan-Bonnet G (2008). “Quantitative challenges in understanding ligand discrimination by alphabeta T cells”. Mol. Immunol. 45 (3): 619–31. doi:10.1016/j.molimm.2007.03.028. PMC 2131735. PMID 17825415.
- ^ Dushek O, van der Merwe PA (2014). “An induced rebinding model of antigen discrimination”. Trends Immunol. 35 (4): 153–8. doi:10.1016/j.it.2014.02.002. PMC 3989030. PMID 24636916.
- ^ Jump up to:a b Medscape > T-cell Disorders. Author: Robert A Schwartz, MD, MPH; Chief Editor: Harumi Jyonouchi, MD. Updated: May 16, 2011
- ^ Jones J, Bannister BA, Gillespie SH, eds. (2006). Infection: Microbiology and Management. Wiley-Blackwell. p. 435. ISBN 978-1-4051-2665-6.
- ^ “The Lymphomas” (PDF). The Leukemia & Lymphoma Society. May 2006. p. 2. Retrieved 2008-04-07.
- ^ Yi JS, Cox MA, Zajac AJ (April 2010). “T-cell exhaustion: characteristics, causes and conversion”. Immunology. 129 (4): 474–81. doi:10.1111/j.1365-2567.2010.03255.x. PMC 2842494. PMID 20201977.
- ^ Wang Q, Pan W, Liu Y, Luo J, Zhu D, Lu Y, Feng X, Yang X, Dittmer U, Lu M, Yang D, Liu J (2018). “Hepatitis B Virus-Specific CD8+ T Cells Maintain Functional Exhaustion after Antigen Reexposure in an Acute Activation Immune Environment”. Front Immunol. 9: 219. doi:10.3389/fimmu.2018.00219. PMC 5816053. PMID 29483916.
- ^ Matloubian M, Concepcion RJ, Ahmed R (December 1994). “CD4+ T cells are required to sustain CD8+ cytotoxic T-cell responses during chronic viral infection”. Journal of Virology. 68 (12): 8056–63. doi:10.1128/JVI.68.12.8056-8063.1994. PMC 237269. PMID 7966595.
- ^ Angelosanto JM, Blackburn SD, Crawford A, Wherry EJ (August 2012). “Progressive loss of memory T cell potential and commitment to exhaustion during chronic viral infection”. Journal of Virology. 86 (15): 8161–70. doi:10.1128/JVI.00889-12. PMC 3421680. PMID 22623779.
- ^ Wherry EJ (June 2011). “T cell exhaustion”. Nature Immunology. 12 (6): 492–9. doi:10.1038/ni.2035. PMID 21739672.
- ^ Okagawa T, Konnai S, Nishimori A, Maekawa N, Goto S, Ikebuchi R, Kohara J, Suzuki Y, Yamada S, Kato Y, Murata S, Ohashi K (June 2018). “+ T cells during bovine leukemia virus infection”. Veterinary Research. 49 (1): 50. doi:10.1186/s13567-018-0543-9. PMC 6006750. PMID 29914540.
- ^ Brooks DG, Trifilo MJ, Edelmann KH, Teyton L, McGavern DB, Oldstone MB (November 2006). “Interleukin-10 determines viral clearance or persistence in vivo”. Nature Medicine. 12 (11): 1301–9. doi:10.1038/nm1492. PMC 2535582. PMID 17041596.
- ^ Tinoco R, Alcalde V, Yang Y, Sauer K, Zuniga EI (July 2009). “Cell-intrinsic transforming growth factor-beta signaling mediates virus-specific CD8+ T cell deletion and viral persistence in vivo”. Immunity. 31 (1): 145–57. doi:10.1016/j.immuni.2009.06.015. PMC 3039716. PMID 19604493.
- ^ Veiga-Parga T, Sehrawat S, Rouse BT (September 2013). “Role of regulatory T cells during virus infection”. Immunological Reviews. 255 (1): 182–96. doi:10.1111/imr.12085. PMC 3748387. PMID 23947355.
- ^ Penaloza-MacMaster P, Kamphorst AO, Wieland A, Araki K, Iyer SS, West EE, O’Mara L, Yang S, Konieczny BT, Sharpe AH, Freeman GJ, Rudensky AY, Ahmed R (August 2014). “Interplay between regulatory T cells and PD-1 in modulating T cell exhaustion and viral control during chronic LCMV infection”. The Journal of Experimental Medicine. 211 (9): 1905–18. doi:10.1084/jem.20132577. PMC 4144726. PMID 25113973.
- ^ Otto GP, Sossdorf M, Claus RA, Rödel J, Menge K, Reinhart K, Bauer M, Riedemann NC (July 2011). “The late phase of sepsis is characterized by an increased microbiological burden and death rate”. Critical Care. 15 (4): R183. doi:10.1186/cc10332. PMC 3387626. PMID 21798063.
- ^ Boomer JS, To K, Chang KC, Takasu O, Osborne DF, Walton AH, Bricker TL, Jarman SD, Kreisel D, Krupnick AS, Srivastava A, Swanson PE, Green JM, Hotchkiss RS (December 2011). “Immunosuppression in patients who die of sepsis and multiple organ failure”. JAMA. 306 (23): 2594–605. doi:10.1001/jama.2011.1829. PMC 3361243. PMID 22187279.
- ^ Shindo Y, McDonough JS, Chang KC, Ramachandra M, Sasikumar PG, Hotchkiss RS (February 2017). “Anti-PD-L1 peptide improves survival in sepsis”. The Journal of Surgical Research. 208: 33–39. doi:10.1016/j.jss.2016.08.099. PMC 5535083. PMID 27993215.
- ^ Patera AC, Drewry AM, Chang K, Beiter ER, Osborne D, Hotchkiss RS (December 2016). “Frontline Science: Defects in immune function in patients with sepsis are associated with PD-1 or PD-L1 expression and can be restored by antibodies targeting PD-1 or PD-L1”. Journal of Leukocyte Biology. 100 (6): 1239–1254. doi:10.1189/jlb.4hi0616-255r. PMC 5110001. PMID 27671246.
- ^ Wei Z, Li P, Yao Y, Deng H, Yi S, Zhang C, Wu H, Xie X, Xia M, He R, Yang XP, Tang ZH (July 2018). “Alpha-lactose reverses liver injury via blockade of Tim-3-mediated CD8 apoptosis in sepsis”. Clinical Immunology. 192: 78–84. doi:10.1016/j.clim.2018.04.010. PMID 29689313.
- ^ Wells AD, Li XC, Strom TB, Turka LA (May 2001). “The role of peripheral T-cell deletion in transplantation tolerance”. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 356 (1409): 617–23. doi:10.1098/rstb.2001.0845. PMC 1088449. PMID 11375065.
- ^ Halloran PF, Chang J, Famulski K, Hidalgo LG, Salazar ID, Merino Lopez M, Matas A, Picton M, de Freitas D, Bromberg J, Serón D, Sellarés J, Einecke G, Reeve J (July 2015). “Disappearance of T Cell-Mediated Rejection Despite Continued Antibody-Mediated Rejection in Late Kidney Transplant Recipients”. Journal of the American Society of Nephrology. 26 (7): 1711–20. doi:10.1681/ASN.2014060588. PMC 4483591. PMID 25377077.
- ^ Steger U, Denecke C, Sawitzki B, Karim M, Jones ND, Wood KJ (May 2008). “Exhaustive differentiation of alloreactive CD8+ T cells: critical for determination of graft acceptance or rejection” (PDF). Transplantation. 85 (9): 1339–47. doi:10.1097/TP.0b013e31816dd64a. PMID 18475193.
- ^ de Mare-Bredemeijer EL, Shi XL, Mancham S, van Gent R, van der Heide-Mulder M, de Boer R, Heemskerk MH, de Jonge J, van der Laan LJ, Metselaar HJ, Kwekkeboom J (August 2015). “Cytomegalovirus-Induced Expression of CD244 after Liver Transplantation Is Associated with CD8+ T Cell Hyporesponsiveness to Alloantigen”. Journal of Immunology. 195 (4): 1838–48. doi:10.4049/jimmunol.1500440. PMID 26170387.
- ^ Gassa A, Jian F, Kalkavan H, Duhan V, Honke N, Shaabani N, Friedrich SK, Dolff S, Wahlers T, Kribben A, Hardt C, Lang PA, Witzke O, Lang KS (2016). “IL-10 Induces T Cell Exhaustion During Transplantation of Virus Infected Hearts”. Cellular Physiology and Biochemistry. 38 (3): 1171–81. doi:10.1159/000443067. PMID 26963287.
- ^ Shi XL, de Mare-Bredemeijer EL, Tapirdamaz Ö, Hansen BE, van Gent R, van Campenhout MJ, Mancham S, Litjens NH, Betjes MG, van der Eijk AA, Xia Q, van der Laan LJ, de Jonge J, Metselaar HJ, Kwekkeboom J (September 2015). “CMV Primary Infection Is Associated With Donor-Specific T Cell Hyporesponsiveness and Fewer Late Acute Rejections After Liver Transplantation”. American Journal of Transplantation. 15 (9): 2431–42. doi:10.1111/ajt.13288. PMID 25943855.
- ^ Williams RL, Cooley S, Bachanova V, Blazar BR, Weisdorf DJ, Miller JS, Verneris MR (March 2018). “Recipient T Cell Exhaustion and Successful Adoptive Transfer of Haploidentical Natural Killer Cells”. Biology of Blood and Marrow Transplantation. 24 (3): 618–622. doi:10.1016/j.bbmt.2017.11.022. PMC 5826878. PMID 29197679.
- ^ Woo SR, Turnis ME, Goldberg MV, Bankoti J, Selby M, Nirschl CJ, Bettini ML, Gravano DM, Vogel P, Liu CL, Tangsombatvisit S, Grosso JF, Netto G, Smeltzer MP, Chaux A, Utz PJ, Workman CJ, Pardoll DM, Korman AJ, Drake CG, Vignali DA (February 2012). “Immune inhibitory molecules LAG-3 and PD-1 synergistically regulate T-cell function to promote tumoral immune escape”. Cancer Research. 72 (4): 917–27. doi:10.1158/0008-5472.CAN-11-1620. PMC 3288154. PMID 22186141.
- ^ Zelle-Rieser C, Thangavadivel S, Biedermann R, Brunner A, Stoitzner P, Willenbacher E, Greil R, Jöhrer K (November 2016). “T cells in multiple myeloma display features of exhaustion and senescence at the tumor site”. Journal of Hematology & Oncology. 9 (1): 116. doi:10.1186/s13045-016-0345-3. PMC 5093947. PMID 27809856.
- ^ Lakins MA, Ghorani E, Munir H, Martins CP, Shields JD (March 2018). “+ T Cells to protect tumour cells”. Nature Communications. 9 (1): 948. doi:10.1038/s41467-018-03347-0. PMC 5838096. PMID 29507342.
- ^ Conforti, Laura (2012-02-10). “The ion channel network in T lymphocytes, a target for immunotherapy”. Clinical Immunology. 142 (2): 105–106. doi:10.1016/j.clim.2011.11.009. PMID 22189042.
- ^ Liu L, Chang YJ, Xu LP, Zhang XH, Wang Y, Liu KY, Huang XJ (May 2018). “T cell exhaustion characterized by compromised MHC class I and II restricted cytotoxic activity associates with acute B lymphoblastic leukemia relapse after allogeneic hematopoietic stem cell transplantation”. Clinical Immunology. 190: 32–40. doi:10.1016/j.clim.2018.02.009. PMID 29477343.
- ^ Kong Y, Zhang J, Claxton DF, Ehmann WC, Rybka WB, Zhu L, Zeng H, Schell TD, Zheng H (July 2015). “PD-1(hi)TIM-3(+) T cells associate with and predict leukemia relapse in AML patients post allogeneic stem cell transplantation”. Blood Cancer Journal. 5 (7): e330. doi:10.1038/bcj.2015.58. PMC 4526784. PMID 26230954.
- “U.S. FDA Approved Immune-Checkpoint Inhibitors and Immunotherapies”. Medical Writer Agency | 香港醫學作家 | MediPR | MediPaper Hong Kong. 2018-08-21. Retrieved 2018-09-22.
- Bhadra R, Gigley JP, Weiss LM, Khan IA (May 2011). “Control of Toxoplasma reactivation by rescue of dysfunctional CD8+ T-cell response via PD-1-PDL-1 blockade”. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (22): 9196–201. doi:10.1073/pnas.1015298108. PMC 3107287. PMID 21576466.